908 matches
-
corespunde la 1,1 miligrame de CO2 produs. 2. EVALUAREA DATELOR Rezultatele analizei se înregistrează în buletinul anexat (vezi apendicele 1), iar valorile biodegradării se calculează conform indicațiilor pct. 1.2. Concentrațiile de CO2 se calculează la cca. 0,1 miligrame pe litru. Valorile biodegradării se rotunjesc la unitatea cea mai apropiată. Derularea testului de degradare este reprezentată grafic printr-o diagramă precum cea anexată (vezi apendicele 2) spre exemplificare. Rezultatele testului de degradare sunt valabile dacă se îndeplinesc condițiile următoare
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
1153-1161. Apendice 1 Buletin pentru testul Sturm modificat Experiența nr.: ............................................................................................. Data de începere a testului: Substanță de testare, de referință: ........................................................................ Concentrația teoretică reținută: Analiza carbonului: ....................................................................................... ThCO2 teoretică: Gama de temperatură înregistrată pe parcursul testului: Producția de CO2: Zile CO2 captat, în miligrame Cantitate cumulativă de CO2 % de ThCO2 28 Validitate: ................................................................................................................ - substanță de referință și % biodegradare: ......................................................... - evoluția totală a CO2 în fiolele de testare martor:.................................................. Apendice 2 Test Sturm modificat Organizație responsabilă pentru test: ........................ Substanță de testare: ........................... Experiența nr.: ................................................... Biodegradare (%) Test Sturm modificat
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
pentru test: ........................ Substanță de testare: ........................ Experiența nr.: ................................................... Biodegradare (%) C.6. DEGRADARE BIOTICĂ: TESTUL ÎN FIOLĂ ÎNCHISĂ 1. METODĂ 1.1. Introducere Obiectivul acestei metode este determinarea biodegradabilității unor substanțe organice în mediu apos, în aerobioză, la o concentrație de 2 miligrame pe litru (concentrație standard) până la 10 miligrame pe litru. În stadiul actual, testul este în special potrivit pentru evaluarea biodegradabilității compușilor solubili în apă. Totuși, nimic nu se opune, în principiu, studierii compușilor volatili sau ușor solubili în apă. Formula
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
Biodegradare (%) C.6. DEGRADARE BIOTICĂ: TESTUL ÎN FIOLĂ ÎNCHISĂ 1. METODĂ 1.1. Introducere Obiectivul acestei metode este determinarea biodegradabilității unor substanțe organice în mediu apos, în aerobioză, la o concentrație de 2 miligrame pe litru (concentrație standard) până la 10 miligrame pe litru. În stadiul actual, testul este în special potrivit pentru evaluarea biodegradabilității compușilor solubili în apă. Totuși, nimic nu se opune, în principiu, studierii compușilor volatili sau ușor solubili în apă. Formula empirică aplicată substanței de testare trebuie să
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
repetă cu un inocul provenind din altă sursă. 1.4. Principiul metodei de testare Se dizolvă într-un mediu mineral (soluție de elemente nutritive minerale) o cantitate determinată din substanța de testare, astfel încât să se obțină o concentrație de 2 miligrame pe litru. Se însămânțează soluția cu un număr restrâns de microorganisme care aparțin unor specii diferite și se mențin fiolele închise la temperatură constantă (20 - 25 șC) la întuneric. Procesul de degradare este urmărit prin analize ale oxigenului pe o
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
furtun flexibil (1.6.1.1). Apoi, se introduce fiecare din soluțiile mamă nutritive (1.6.1.2) în flacoane până la obținerea volumului final și se adaugă substanțele de testare sau de referință până când se ating concentrațiile definitive de 2 miligrame pe litru și câteodată de 5 miligrame sau de 10 miligrame pe litru. Concentrația aproximativă de 9 miligrame de oxigen dizolvat pe litru de apă de diluare la 20șC limitează concentrația inițială posibilă a substanței de testare la cca. 2
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
se introduce fiecare din soluțiile mamă nutritive (1.6.1.2) în flacoane până la obținerea volumului final și se adaugă substanțele de testare sau de referință până când se ating concentrațiile definitive de 2 miligrame pe litru și câteodată de 5 miligrame sau de 10 miligrame pe litru. Concentrația aproximativă de 9 miligrame de oxigen dizolvat pe litru de apă de diluare la 20șC limitează concentrația inițială posibilă a substanței de testare la cca. 2 miligrame pe litru, astfel încât se garantează menținerea
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
soluțiile mamă nutritive (1.6.1.2) în flacoane până la obținerea volumului final și se adaugă substanțele de testare sau de referință până când se ating concentrațiile definitive de 2 miligrame pe litru și câteodată de 5 miligrame sau de 10 miligrame pe litru. Concentrația aproximativă de 9 miligrame de oxigen dizolvat pe litru de apă de diluare la 20șC limitează concentrația inițială posibilă a substanței de testare la cca. 2 miligrame pe litru, astfel încât se garantează menținerea unei concentrații de oxigen
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
în flacoane până la obținerea volumului final și se adaugă substanțele de testare sau de referință până când se ating concentrațiile definitive de 2 miligrame pe litru și câteodată de 5 miligrame sau de 10 miligrame pe litru. Concentrația aproximativă de 9 miligrame de oxigen dizolvat pe litru de apă de diluare la 20șC limitează concentrația inițială posibilă a substanței de testare la cca. 2 miligrame pe litru, astfel încât se garantează menținerea unei concentrații de oxigen importante după oxidarea substanței. Substanțele cu degradabilitate
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
pe litru și câteodată de 5 miligrame sau de 10 miligrame pe litru. Concentrația aproximativă de 9 miligrame de oxigen dizolvat pe litru de apă de diluare la 20șC limitează concentrația inițială posibilă a substanței de testare la cca. 2 miligrame pe litru, astfel încât se garantează menținerea unei concentrații de oxigen importante după oxidarea substanței. Substanțele cu degradabilitate slabă sau substanțele a căror CTO este slabă se pot testa în paralel la concentrații mai ridicate. Însămânțarea se realizează cu o pipetă
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
valabile dacă se îndeplinesc condițiile următoare: - în aceeași serie de teste, biodegradarea substanței referință să fie ≥ 60 % pentru o perioadă 28 de zile. Dacă nu este cazul, întreaga serie se respinge. - consumul de oxigen, fără inoculare, nu depășește 0,3 miligrame de oxigen pe litru după 5 zile și 0,4 miligrame de oxigen pe litru după 28 zile; martorul cu inoculare nu arată un consum > 0,5 miligrame de oxigen pe litru după 5 zile și 0,6 miligrame de
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
biodegradarea substanței referință să fie ≥ 60 % pentru o perioadă 28 de zile. Dacă nu este cazul, întreaga serie se respinge. - consumul de oxigen, fără inoculare, nu depășește 0,3 miligrame de oxigen pe litru după 5 zile și 0,4 miligrame de oxigen pe litru după 28 zile; martorul cu inoculare nu arată un consum > 0,5 miligrame de oxigen pe litru după 5 zile și 0,6 miligrame de oxigen pe litru după 15 până la 28 zile. 3. REZULTATE 3
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
serie se respinge. - consumul de oxigen, fără inoculare, nu depășește 0,3 miligrame de oxigen pe litru după 5 zile și 0,4 miligrame de oxigen pe litru după 28 zile; martorul cu inoculare nu arată un consum > 0,5 miligrame de oxigen pe litru după 5 zile și 0,6 miligrame de oxigen pe litru după 15 până la 28 zile. 3. REZULTATE 3.1. Protocol de test Protocolul de test trebuie să conțină, dacă este posibil: - datele înregistrate sub forma
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
3 miligrame de oxigen pe litru după 5 zile și 0,4 miligrame de oxigen pe litru după 28 zile; martorul cu inoculare nu arată un consum > 0,5 miligrame de oxigen pe litru după 5 zile și 0,6 miligrame de oxigen pe litru după 15 până la 28 zile. 3. REZULTATE 3.1. Protocol de test Protocolul de test trebuie să conțină, dacă este posibil: - datele înregistrate sub forma prevăzută în buletin (vezi apendicele 3); - derularea testului de degradare reprezentată
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
de calitate 1.5.1. Repetabilitate În general bună, în special pentru substanțele chimice a căror solubilitate în apă este mai mare de 0,1 grame pe litru. 1.5.2. Sensibilitate A) Consum de oxigen: limită de detecție - 1 miligram (oxigen consumat de microorganisme). B) Analiză chimică: depinde de sensibilitatea tehnicilor analitice folosite. 1.5.3. Specificitate Această metodă se aplică oricărei substanțe chimice nevolatile, pentru care (C)apă / (C)aer ≥ 1. Pentru produsele volatile, se folosește un "aparat de
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
000 ml cu apă (1.6.1.1.) 3.2.1. Aparatură Aparatură de măsură a CBO echipată cu 6 fiole cu un volum de 300 mililitri fiecare. Fiolele nr. 1 și nr. 2: 300 mililitri de apă deionizată + 30 miligrame de substanță care trebuie studiată. Fiolele nr. 3 și nr. 4: 300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de substanță de examinat. Fiola nr. 5: 300 mililitri de apă mediu
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
cu un volum de 300 mililitri fiecare. Fiolele nr. 1 și nr. 2: 300 mililitri de apă deionizată + 30 miligrame de substanță care trebuie studiată. Fiolele nr. 3 și nr. 4: 300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de substanță de examinat. Fiola nr. 5: 300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de anilină sau altă substanță de referință. Fiola nr.
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
Fiolele nr. 1 și nr. 2: 300 mililitri de apă deionizată + 30 miligrame de substanță care trebuie studiată. Fiolele nr. 3 și nr. 4: 300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de substanță de examinat. Fiola nr. 5: 300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de anilină sau altă substanță de referință. Fiola nr. 6: 300 mililitri mediu de cultură suport
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
studiată. Fiolele nr. 3 și nr. 4: 300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de substanță de examinat. Fiola nr. 5: 300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de anilină sau altă substanță de referință. Fiola nr. 6: 300 mililitri mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă). 1.6.3. Pregătirea inoculării 1.6.3.1. Noroi
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de substanță de examinat. Fiola nr. 5: 300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de anilină sau altă substanță de referință. Fiola nr. 6: 300 mililitri mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă). 1.6.3. Pregătirea inoculării 1.6.3.1. Noroi activat Locuri de prelevare a probelor de
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
substanță de examinat. Fiola nr. 5: 300 mililitri de apă mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă) + 30 miligrame de anilină sau altă substanță de referință. Fiola nr. 6: 300 mililitri mediu de cultură suport + 9 miligrame de noroi activat (greutate netă). 1.6.3. Pregătirea inoculării 1.6.3.1. Noroi activat Locuri de prelevare a probelor de noroi: în principiu, probele de noroi se prelevează în cel puțin 10 locuri diferite repartizate pe toată suprafața
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
șC; - gradul de aerare: cu ocazia înlocuirii lichidului supranatant cu apă uzată sintetică, suspensia conținută în recipientul de cultură trebuie să fie suficient aerată, astfel încât să mențină concentrația de oxigen dizolvat în soluție la o valoare mai mare de 5 miligrame pe litru; - microflora noroiului activat: observarea noroiului activat la microscop (x 100 a x 400) trebuie să permită evidențierea, pe lângă fulgi, a unui număr de protozoare de diferite specii; - amestec de noroi activat proaspăt și stătut: în vederea menținerii aceleiași activități
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
produsului care trebuie studiat și pregătirea pentru test Se prevăd recipientele de testare menționate în continuare și se aduc la temperatura necesară efectuării testului (vezi 1.6.2.). 1. Două recipiente care conțin apă la care s-au adăugat 100 miligrame pe litru de substanță care trebuie studiată (recipientele 1 și 2). 2. Două recipiente care conțin mediul de cultură suport, la care s-au adăugat 100 miligrame pe litru de substanță care trebuie studiată; dacă este nevoie, se ajustează pH
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
2.). 1. Două recipiente care conțin apă la care s-au adăugat 100 miligrame pe litru de substanță care trebuie studiată (recipientele 1 și 2). 2. Două recipiente care conțin mediul de cultură suport, la care s-au adăugat 100 miligrame pe litru de substanță care trebuie studiată; dacă este nevoie, se ajustează pH-ul acestei soluții la 7 înainte de însămânțarea noroiului activat (recipientele 3 și 4). 3. Un recipient care conține mediul de cultură suport, la care s-au adăugat
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
litru de substanță care trebuie studiată; dacă este nevoie, se ajustează pH-ul acestei soluții la 7 înainte de însămânțarea noroiului activat (recipientele 3 și 4). 3. Un recipient care conține mediul de cultură suport, la care s-au adăugat 100 miligrame pe litru de anilină sau orice altă substanță de referință (recipientul 5). 4. Un recipient martor care conține doar mediul de cultură suport (recipientul 6). 1.6.5.1. Însămânțarea noroiului activat Se adaugă inocul în recipientele de testare 3
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]