6,328 matches
-
16 decembrie 2003 de modificare a Directivei 96/82/ CE a Consiliului privind controlul asupra riscului de accidente majore care implică substanțe periculoase 4, precum și elaborarea documentului privind cele mai bune tehnici disponibile care se referă la gestionarea deșeurilor de steril și reziduurilor de procesare provenite din activitățile miniere în temeiul Directivei 96/61/ CE a Consiliului din 24 septembrie 1996 privind prevenirea și controlul integrat al poluării 5. (2) În Rezoluția 6 sa din 5 iulie 2001 cu privire la respectiva comunicare
32006L0021-ro () [Corola-website/Law/295030_a_296359]
-
a efectelor nefaste asupra mediului sau sănătății umane care ar rezulta ca urmare a gestionării deșeurilor din industriile extractive, cum ar fi reziduurile de procesare (de exemplu, deșeuri solide sau șlamuri care rămân după tratarea resurselor minerale prin diverse tehnici), sterilul și materialul de descopertă (de exemplu, materialul din operațiunile de extracție, care este mutat pe măsura intrării într-un corp de minereu sau mineral, inclusiv pe parcursul perioadei de dezvoltare anterioare producției) și solul vegetal (de exemplu, stratul superior al solului
32006L0021-ro () [Corola-website/Law/295030_a_296359]
-
aplicate resurselor minerale, inclusiv cele provenind din exploatarea carierelor, destinat extracției mineralelor, inclusiv modificarea dimensiunii, trierea, separarea și leșierea, precum și reprocesarea deșeurilor înlăturate anterior, dar cu excepția topirii, a procedeelor de prelucrare termică (alta decât calcinarea) și a procedeelor metalurgice; 9. "steril de procesare", deșeuri solide sau șlamuri care rămân după tratarea mineralelor prin procedee de separare (de exemplu, măcinare, zdrobire, sortare după mărime, flotație și alte tehnici fizico-chimice) pentru extragerea mineralelor valoroase dintr-o rocă mai puțin valoroasă; 10. "haldă", un
32006L0021-ro () [Corola-website/Law/295030_a_296359]
-
solide la suprafață; 11. "dig", o structură construită proiectată să rețină sau să limiteze apa și/sau deșeurile într-un iaz de decantare; 12. "iaz", un sit natural sau un amplasament amenajat pentru depozitarea deșeurilor fin granulate, în mod normal steril de procesare, împreună cu cantități variabile de apă liberă, rezultate din tratarea resurselor minerale, precum și din recircularea și limpezirea apei de proces; 13. "cianuri disociabile în mediu slab acid", cianuri și compuși cianurici care se disociază în mediu slab acid la
32006L0021-ro () [Corola-website/Law/295030_a_296359]
-
bune tehnici disponibile și, în orice caz, în instalațiile de deșeuri care au obținut anterior o autorizație sau care sunt deja în exploatare la 1 mai 2008, concentrația de cianuri disociabile în mediu slab acid la punctul de descărcare a sterilului de la stația de procesare în iaz nu depășește 50 ppm începând cu 1 mai 2008, 25 ppm începând cu 1 mai 2013, 10 ppm începând cu 1 mai 2018 și 10 ppm în instalațiile de deșeuri care au obținut o
32006L0021-ro () [Corola-website/Law/295030_a_296359]
-
într-un tampon de 1,5 ml (a se vedea apendicele 3). Se utilizează 500 μl pentru testele de C. m. ssp. sepedonicus, 500 μl pentru testele de Ralstonia solanacearum și 500 μl ca valoare de referință. Se adaugă glicerol steril la concentrația finală de 10-25 % (în volum) la 500 μl din alicota de referință și la alicota de test rămasă, se agită și se depozitează la o temperatură între -16 și -24 ° C (săptămâni) sau între -68 și -86 °C
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
segment de unu-doi centimetri de la baza fiecărei tulpini, chiar deasupra solului. După ce s-au dezinfectat rapid cu etanol de 70 %, segmentele de tulpini se usucă de îndată cu hârtie de filtru. Se colectează segmentele de tulpini într-un recipient steril închis, respectând procedura de eșantionare expusă în continuare. 3.2.2. Segmentele de tulpini se tratează urmând una dintre următoarele proceduri: (a) se acoperă segmentele de tulpină cu o baie de tampon de extracție în cantitate suficientă (în jur de
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
testului la o temperatură de 4-10 °C, iar cealaltă se depozitează la o temperatură între -16 și -24 ° C (săptămâni) sau între -68 și -86 °C (luni), după ce s-a introdus în ea în prealabil o cantitate de 10-25 % glicerol steril, în cazul în care va fi necesară efectuarea unui al doilea test. 4. TEST DE IMUNOFLUORESCENȚĂ Principiu Ținând seama de capacitatea sa recunoscută de a atinge pragurile cerute, se recomandă utilizarea testului de imunofluorescență ca principal test de depistare. În
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
C, se conservă extractul concentrat și se elimină etanolul. 14. Se lasă să se usuce extractul în aer liber sau într-un Speed Vac de ADN. 15. Se repune în suspensie extractul în concentrat în 100 μl de apă ultrapură sterilă și se lasă la temperatura mediului înconjurător timp de cel puțin 20 de minute. 16. Se conservă la -20 °C până atunci când se utilizează pentru PCR. 17. Se izolează orice precipitat alb prin centrifugare și se utilizează 5 μl din
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
protocoalele publicate (a se vedea apendicele 6). Protocolul PCR validat este o reacție multiplex care include și un control PCR intern. 6.2.3. Se adaugă 5 μl de extract de ADN la 25 μl reactiv PCR, în tuburi PCR sterile. 6.2.4. Se constituie o probă martor negativ care nu conține decât amestecul reactiv pentru PCR și se adaugă în locul probei o apă pură provenind din aceeași sursă ca și cea utilizată în amestecul PCR. 6.2.5. Se
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
incizie. 7.3.1. Se ține planta între două degete și se pune cu pipeta pe tulpină, între cotiledoane și prima frunză, o picătură (în jur de 5-10 μl) de extract concentrat în suspensie. 7.3.2. Cu ajutorul unui scalpel steril se practică, plecând de la picătura de extract concentrat, o incizie diagonală cu o lungime de 1,0 cm și o adâncime aproximativ egală cu două treimi din grosimea tulpinii. 7.3.3. Se închide incizia cu vaselină sterilă, folosind o
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
unui scalpel steril se practică, plecând de la picătura de extract concentrat, o incizie diagonală cu o lungime de 1,0 cm și o adâncime aproximativ egală cu două treimi din grosimea tulpinii. 7.3.3. Se închide incizia cu vaselină sterilă, folosind o seringă. 7.4. Inoculare prin injecție Inocularea se practică în tulpini de pătlăgele vinete, chiar deasupra cotiledoanelor, cu ajutorul unei seringi dotate cu un ac hipodermic (nu mai puțin de 23 G). Eșantionul se repartizează între pătlăgelele vinete. 7
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
este posibil, cu extract din tubercul infectat în mod natural (a se vedea secțiunea 4). 7.6. Ca martori negativi, se inoculează cinci plante prin aceeași metodă (a se vedea punctul 7.3 sau 7.4) cu o soluție tampon sterilă de extract concentrat. 7.7. Se lasă plantele la incubat până la patru săptămâni la temperaturi între 18 °C și 24 °C, în spații adaptate la condițiile de carantină. În timpul incubației se menține o lumină suficientă și un grad ridicat de
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
m. ssp. sepedonicus. 10.4. Se asigură izolarea față de plantele simptomatice, prelevând o secțiune de tulpină la o înălțime de 2 cm deasupra punctului de inoculare. Se reduce și se pune în suspensie într-o cantitate mică de apă distilată sterilă sau de tampon fosfatat la 50 mM (a se vedea apendicele 3). Se izolează de suspensie, diluând prin însămânțare simplă sau în striuri pe MTNA și YPGA (a se vedea apendicele 5), se lasă la incubat timp de trei-cinci zile
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
albă, cunoscută ca fiind lipsită de C. m. ssp. sepedonicus. solanacearum. Se tratează stolonii urmând metoda obișnuită și se repune extractul concentrat în suspensie de 10 mililitri. Se varsă 900 μl de extract concentrat repus în suspensie în zece microfiole sterile de 1,5 ml. Se însămânțează prima microfiolă cu 100 μl din suspensia de C. m. ssp. sepedonicus. Se omogenizează prin agitare. Se stabilesc niveluri de contaminare la a zecea parte, urmând diluția în următoarele cinci microfiole. Cele șase microfiole
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
parte, urmând diluția în următoarele cinci microfiole. Cele șase microfiole contaminate vor fi utilizate ca martori pozitivi. Cele patru microfiole necontaminate vor fi utilizate ca martori negativi. Microfiolele se etichetează în consecință. Se prepară alicote de 100 μl în microfiole sterile de 1,5 ml, astfel încât să se obțină nouă replici ale fiecărei probe martor. Se depozitează la temperaturi între -16 și -24 °C până în momentul utilizării. Prezența și cuantificarea C. m. ssp. sepedonicus în probele martori trebuie confirmate în primul
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
de C. m. ssp. sepedonicus = 502 bp (în prezența primerului PSA). Dimensiunea prevăzută a amplimerului controlului PCR intern 18S rRNA = 377 bp (în prezența primerului NS). 1.2. Amestec reactiv destinat PCR Reactiv Cantitate pe reacție Concentrație finală Apă ultrapură sterilă 15,725 μl 10x tampon PCR1 (15 mM MgCl2) 2,5 μl 1 x (1,5 mM MgCl2) BSA (fracție V) (10 %) 0,25 μl 0,1 % Amestec d-nTP (20 mM) 0,125 μl 0,1 mM Primer PSA-1
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
prepară cantități de soluție de hibridizare, respectând calculele din tabel. Pentru fiecare lamă (care conține 2 probe diferite în duplicat), sunt necesari 90 μl de soluție de hibridizare. Tabel: Cantități sugerate pentru prepararea amestecului de hibridizare 2 8 Apă ultrapură sterilă 50,1 200,4 Hibmix 3 x 30,0 120,0 1 % Dodecilsulfat de sodiu 0,9 3,6 Sonda EUB 338 (100 ng/μl) 4,5 18,0 Sonda CMSCY 301 (100 ng/μl) 4,5 18,0 Volum
32006L0056-ro () [Corola-website/Law/295065_a_296394]
-
sau secțiunile de țesut decolorat din inelul vascular al tuberculului de cartof sau din căile vasculare ale tulpinii plantei de cartof, de tomată sau de alte plante gazdă ofilite. Se pune în suspensie, într-un volum mic de apă distilată sterilă sau într-un tampon fosfat de 50 mM (apendicele 4). Se lasă cinci-zece minute pe masă. (b) Se prepară o serie de diluții zecimale ale suspensiei. (c) Se transferă 50-100 μl de suspensie și de diluții într-un mediu nutritiv
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
Se face o nouă suspensie a extractului concentrat în 1,5 ml tampon concentrat (apendicele 4). Se folosesc 500 μl pentru a testa R. solanacearum, 500 μl pentru Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus și 500 μl pentru referință. Se adaugă glicerol steril la concentrația finală de 10-25 % (volum) la 500 μl de alicote de referință și la alicota de testare rămasă, se omogenizează în vortex și se depozitează la o temperatură situată între - 16 și - 24 °C (săptămâni) sau între - 68 și
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
de tulpină. În cazul în care se efectuează studii, acestea trebuie bazate pe un eșantion reprezentativ din punct de vedere statistic al populației vegetale în cauză. 2.1.1. Se colectează bucăți de tulpină de 1-2 cm într-un recipient steril închis în conformitate cu următoarele proceduri de prelevare: Plantule de tomată de pepinieră: cu ajutorul unui cuțit curat și dezinfectat se taie o bucată de 1 cm la baza fiecărei tulpini, chiar deasupra nivelului solului. Plante de tomată cultivate în seră sau în
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
1.1.3-1.1.5. 2.1.5. Se împarte extractul eșantionului inițial sau concentrat în două părți egale. Se păstrează jumătate la o temperatură de 4-10 °C pe parcursul testului și se conservă cealaltă jumătate cu 10-25 % (volum) de glicerol steril la o temperatură situată între - 16 și - 24 °C (săptămâni) sau între - 68 și - 86 °C (luni) în cazul în care este necesar un test suplimentar. 2.2. Teste A se vedea diagrama și descrierea testelor și protocoalelor optimizate în
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
8 Cultivarea riscă să eșueze din cauza concurenței sau a efectului inhibator al bacteriilor saprofite. În cazul în care populațiile mari de saprofite sunt suspectate că ar putea afecta fiabilitatea izolării, testele de izolare trebuie reîncepute după diluarea eșantionului în apă sterilă. 9 Identificarea fiabilă a culturilor pure de izolări prezumtive de R. solanacearum necesită efectuarea testelor descrise la secțiunea VI.B. 10 Testul de patogenitate este descris în secțiunea VI.C. 2. Metode pentru detectarea și identificarea R. solanacearum în apă
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
A se preleva eșantioane de apă de suprafață în apropierea plantelor gazdă în cazul în care aceste plante gazdă sunt prezente. 2.1.1. În punctele de prelevare selecționate, eșantioanele de apă se colectează prin umplerea unor tuburi sau sticle sterile de unică folosință la o adâncime, atunci când este posibil, mai mare de 30 cm și la o distanță maximă de 2 m de la mal. Pentru efluenții proveniți din prelucrarea cartofilor sau efluenții de ape reziduale, se colectează eșantioane în punctul
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
sol sau de nămol cu ajutorul unui agitator rotativ (250 turații/minut) într-un tampon de extracție de 60-150 ml (apendicele 4) timp de două ore cel mult. După caz, pentru a favoriza dispersia, se adaugă 0,02 % de Tween 20 steril și 10-20 g de pietriș steril. 2.1.3. Suspensia se păstrează, în timpul testului, la 4 °C. 2.2. Teste A se vedea diagrama și descrierea testelor în apendicele corespunzătoare. Secțiunea VI Protocoale optimizate pentru detectarea și identificarea R. Solanacearum
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]