2,716 matches
-
la o temperatură de 28-30°C. 9. EVALUARE Se măsoară diametrul zonelor de inhibare cu aproximație de 0,1 mm. Se înregistrează valorile medii ale măsurătorilor pentru fiecare concentrație de hârtie milimetrică semilogaritmică indicând logaritmul concentrațiilor în raport cu diametrele zonelor de inhibare. Se trasează liniile "optime" ale soluției standard și ale extractului, ca în exemplul menționat în continuare. Se determină punctul "optim" pentru cel mai scăzut nivel standard (SL) folosind formula: În același mod se determină punctele "optime" pentru nivelul cel mai
jrc464as1978 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85602_a_86389]
-
cât și cele de depistare a cancerogenezei. La acest nivel, un rezultat pozitiv la un test de depistare a cancerogenezei ar trebui să conducă la realizarea unui studiu de cancerogeneză. Studii ecotoxicologice - Un test pe alge: o specie, test de inhibare a creșterii. - Studiu de toxicitate îndelungată, realizate pe Daphnia magna (21 de zile, astfel studiul trebuie să includă, de asemenea, determinarea "nivelului fără efect" pentru reproducere și a "nivelului fără efect" pentru mortalitate). Condițiile în care se realizează acest test
jrc539as1979 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85677_a_86464]
-
martor negativ (solvent) în planul fiecărei experiențe. 1.6.2.5. Doze Pentru dosarul de bază, se folosește o doză din substanța de testare, adică doza maximă tolerată sau cea care determină apariția unor semne de citotoxicitate, de exemplu, o inhibare parțială a mitozei. Se pot folosi și alte doze, când sunt indicate din motive de ordin științific. Dacă testul servește de metodă de verificare, se folosesc cel puțin două doze suplimentare. 1.6.3. Mod de operare Testul se poate
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
mai mare de 70 % în 28 de zile; în caz contrar, testul se consideră nul și trebuie reînceput, folosindu-se un inocul provenind din altă sursă. În această metodă specială de testare se folosește glucoză, în special pentru testul de inhibare și pentru testarea activității substanței inoculate, care se poate, de asemenea, efectua, cu anilină, acetat de sodiu și benzoat de sodiu. 1.4. Principiul metodei de testare Se biodegradează substanțele organice dizolvate în apă cu ajutorul microorganismelor chimicorganotrope, care le folosesc
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
posibil o transcriere a tuturor rezultatelor experiențelor realizate pe substanța de testare, pe substanța de referință și pe testele oarbe. Se menționează în special punctele următoare: - rata de dispariție a produsului în fiola nr. 4 la sfârșitul testului; - fenomenele de inhibare eventual înregistrate; - probele de validitate a testului; - derularea testului de degradare se reprezintă într-o diagramă indicând faza de latență, faza de degradare, panta curbei, intervalul de timp ("intervalul de timp" reprezintă aici o perioadă de 10 zile începând cu
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
se scot din baie după 5, 15 și 28 de zile și se analizează. Fiecare serie este însoțită de o serie completă de teste paralele pentru determinarea martorului, a consumului de oxigen fără inoculare și a substanței de referință. Controlul inhibării: Controlul efectelor de inhibare ale substanțelor în testul în fiolă închisă este simplu de realizat: Seria 1: 2 mg /l de compus ușor biodegradabil, de exemplu, un alcool gras condensat cu oxid de etilenă cu un raport molecular de 1
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
după 5, 15 și 28 de zile și se analizează. Fiecare serie este însoțită de o serie completă de teste paralele pentru determinarea martorului, a consumului de oxigen fără inoculare și a substanței de referință. Controlul inhibării: Controlul efectelor de inhibare ale substanțelor în testul în fiolă închisă este simplu de realizat: Seria 1: 2 mg /l de compus ușor biodegradabil, de exemplu, un alcool gras condensat cu oxid de etilenă cu un raport molecular de 1: 10, sau oricare alta
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
l de compuși ușor biodegradabili, plus x mg/l din substanța de testare. Dacă valorile CBO ale seriei 3 sunt mai mici decât suma valorilor seriilor 1 și 2, se poate considera că substanța de testare nu are efecte de inhibare față de bacterii, la această concentrație. Acest control este întotdeauna necesar dacă o degradabilitate negativă sau slabă pare ilogică la vederea structurii substanței de testare, adică dacă anumiți indici permit presupunerea faptului că această degradare slabă este provocată de fenomene de
jrc904as1984 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86043_a_86830]
-
de piele de tip melanom și non-melanom și (b) efectele asupra sistemului imunologic; (ii) efectele radiațiilor UV-B, inclusiv dependența de lungimea de undă, asupra (a) culturilor agricole, pădurilor și altor ecosisteme terestre și (b) hranei acvatice și pescuitului, precum și posibila inhibare a producerii de oxigen de către fitoplanctonul marin; (iii) mecanismele prin care radiațiile UV-B acționează asupra materiilor biologice, speciilor și ecosistemelor, inclusiv: relația dintre doză, rata dozei și răspuns; fotoreparație, adaptare și protecție; (iv) studii ale spectrelor de acțiune biologică și
jrc1305as1988 by Guvernul României () [Corola-website/Law/86444_a_87231]
-
determinare. 2. PRINCIPIU Eșantionul este extras cu un amestec de acetonă/apă/acid clorhidric. Activitatea antibiotică a extractului se determină prin măsurarea difuziunii avoparcinei într-un mediu agar inoculat cu Bacillus subtilis. Difuziunea este arătată prin formarea unor zone de inhibare a microorganismelor. Diametrul acestor zone este considerat a fi direct proporțional cu logaritmul concentrației de antibiotic raportat la intervalul concentrațiilor de antibiotice folosite. 3. MICROORGANISM: BACILLUS SUBTILIS ATCC 6633 (NCIB 8054) 3.1 Menținerea culturii-mamă Se inoculează eprubete ce conțin
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
4.1) cu suspensie de spori (3.2) la 50-60°C. Prin încercări preliminare pe plăcile cu mediu de testare (4.1) se determină cantitatea de suspensie de spori necesară pentru obținerea celor mai mari și mai clare zone de inhibare cu diferite concentrații de avoparcină. 7.2 Pregătirea plăcilor Difuziunea în agar se efectuează pe plăci cu cele patru concentrații ale soluției standard (S8, S4, S2, S1) și cu cele patru concentrații ale soluției de testare (U8, U4, U2, U1
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
testare și soluție standard (între 0,10 și 0,15 ml pe orificiu, în funcție de diametru), măsurate cu exactitate. Fiecare concentrație se aplică de cel puțin patru ori astfel încât fiecare determinare să fie supusă unei evaluări a 32 de zone de inhibare. 7.3 Incubarea Se incubează plăcile timp de 16-18 ore la 30°C. 8. EVALUAREA Se măsoară diametrul zonelor de inhibare cu o precizie de până la 0.1 mm. Se înregistrează valoarea medie a măsurătorilor pentru fiecare concentrație, pe hârtie
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
aplică de cel puțin patru ori astfel încât fiecare determinare să fie supusă unei evaluări a 32 de zone de inhibare. 7.3 Incubarea Se incubează plăcile timp de 16-18 ore la 30°C. 8. EVALUAREA Se măsoară diametrul zonelor de inhibare cu o precizie de până la 0.1 mm. Se înregistrează valoarea medie a măsurătorilor pentru fiecare concentrație, pe hârtie milimetrică cu semilogaritmi, indicând logaritmul concentrațiilor în raport cu diametrele zonelor de inhibare. Se trasează "cele mai potrivite" linii pentru soluția standard și
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
la 30°C. 8. EVALUAREA Se măsoară diametrul zonelor de inhibare cu o precizie de până la 0.1 mm. Se înregistrează valoarea medie a măsurătorilor pentru fiecare concentrație, pe hârtie milimetrică cu semilogaritmi, indicând logaritmul concentrațiilor în raport cu diametrele zonelor de inhibare. Se trasează "cele mai potrivite" linii pentru soluția standard și a extractului, ca în exemplul menționat în continuare: Se determină punctul "optim" pentru nivelul cel mai ridicat de soluție standard (SL) folosind formula: (a) Se determină punctul "optim" pentru nivelul
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
de metanol. Extractul este supus unor proceduri corespunzătoare în conformitate cu conținutul de monensin de sodiu din eșantion. Activitatea antibiotică este determinată prin măsurarea difuziunii sodiului monensin în mediul agar inoculat cu Bacillus subtilis. Difuziunea este indicată de formarea de zone de inhibare ale microorganismului. Diametrul acestor zone este considerat a fi direct proporțional cu logaritmul concentrației antibiotice raportat la intervalul de concentrații antibiotice folosite. Sensibilitatea sistemului de testare este redusă în prezența ionilor de sodiu. 3. MICROORGANISM: BACILLUS SUBTILIS ATCC 6633 (NCIB
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
4.2) cu suspensie de spori (3.2) la 50-60°C. Prin teste preliminare pe plăcile cu mediu de testare (4.2) se determină cantitatea de suspensie de spori necesară pentru obținerea celor mai mari și mai clare zone de inhibare cu diferite concentrații de sodiu monensin. 8.2 Pregătirea plăcilor Difuziunea în agar se efectuează pe plăcile cu cele patru concentrații ale soluției standard (S8, S4, S2, S1) și cu cele patru concentrații ale soluției de testare (U8, U4, U2
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
de testare și soluție standard (între 0,10 și 0,15 ml pe orificiu, în funcție de diametru), măsurate cu exactitate. Fiecare concentrație se aplică de cel puțin patru ori astfel încât fiecare determinare este supusă unei evaluări a 32 de zone de inhibare. 8.3 Incubare Se incubează plăcile timp de aproximativ 18 ore la 35-37°C. 9. EVALUARE Se măsoară diametrul zonelor de inhibare cu o precizie de până la 0.1 mm. Se înregistrează valoarea medie a măsurătorilor pentru fiecare concentrație, pe
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
aplică de cel puțin patru ori astfel încât fiecare determinare este supusă unei evaluări a 32 de zone de inhibare. 8.3 Incubare Se incubează plăcile timp de aproximativ 18 ore la 35-37°C. 9. EVALUARE Se măsoară diametrul zonelor de inhibare cu o precizie de până la 0.1 mm. Se înregistrează valoarea medie a măsurătorilor pentru fiecare concentrație, pe hârtie milimetrică cu semilogaritmi, indicând logaritmul concentrațiilor în raport cu diametrele zonelor de inhibare. Se schițează linii "optime" pentru soluția standard și a extractului
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
la 35-37°C. 9. EVALUARE Se măsoară diametrul zonelor de inhibare cu o precizie de până la 0.1 mm. Se înregistrează valoarea medie a măsurătorilor pentru fiecare concentrație, pe hârtie milimetrică cu semilogaritmi, indicând logaritmul concentrațiilor în raport cu diametrele zonelor de inhibare. Se schițează linii "optime" pentru soluția standard și a extractului, ca în exemplul menționat în continuare: Se determină punctul "optim" pentru nivelul cel mai scăzut de soluție standard (SL) folosind formula: Se determină punctul "optim" pentru nivelul cel mai ridicat
jrc686as1981 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85824_a_86611]
-
indusă de una dintre aceste substanțe. Proprietățile cancerigene nu reprezintă un motiv de îngrijorare. Efectele cunoscute ale acestor fungicide asupra reproducerii sunt explicabile prin interacțiunea cu microtubulii aparatului mitotic. Mecanismul de inducere a aneuploidiei este bine înțeles și constă în inhibarea polimerizării tubulinei, proteină care este esențială pentru segregarea cromozomială în timpul diviziunii celulare: acesta nu implică nici o interacțiune cu ADN-ul. Dat fiind că sunt prezente copii multiple ale moleculelor de tubulină în celulele în proliferare, în prezența unei concentrații slabe
32005L0053-ro () [Corola-website/Law/293979_a_295308]
-
din Regulamentul (CE) nr. 853/2004. B. Alte metode de detectare 1. O serie de metode, precum cromatografia lichidă de înaltă performanță (CLHP) cu detectare fluorimetrică, cromatografia lichidă (CL), spectrometria de masă (SM), imunotestele și testele funcționale, precum testul de inhibare a fosfatazei, pot fi utilizate în locul metodelor biologice sau pot să le completeze, cu condiția ca, singure sau combinate, acestea să permită detectarea cel puțin a analogilor menționați în cele ce urmează, să fie cel puțin la fel de eficiente ca metodele
32005R2074-ro () [Corola-website/Law/294454_a_295783]
-
de la 1 ianuarie 2005). Atât metoda de difuziune în agar, cât și cea de diluție în bulion pot fi utilizate. Rezultatele se comunică sub formă de date cantitative (concentrații minime inhibitoare - CMI - pentru metodele de diluție și diametrul zonei de inhibare pentru metodele de difuziune) și calitative (proporția de izolați rezistenți). Datele cantitative se bazează pe o interpretare în conformitate cu pragurile (cut-off values) epidemiologice prezentate de European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST) la http://www.eucast.org Izolații sunt testați cu privire la
32006D0668-ro () [Corola-website/Law/294939_a_296268]
-
descrise în secțiunea VI.A.8. 9 Testul biologic este descris în secțiunea VI.A.9. 10 Morfologia tipică a coloniei este descrisă în secțiunea II.3.d. 11 Cultivarea sau testele biologice riscă să eșueze din cauza concurenței sau a inhibării bacteriilor saprofite. În cazul în care se obțin rezultate pozitive clare în urma testelor de selecție, însă testele de izolare sunt negative, trebuie repetate testele de izolare din același extract concentrat sau din țesut vascular suplimentar prelevat de la talonul tuberculilor tăiați
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
descrise în secțiunea VI.A.8. 9 Testul biologic este descris în secțiunea VI.A.9. 10 Morfologia tipică a coloniei este descrisă în secțiunea II.3.d. 11 Cultivarea sau testele biologice riscă să eșueze din cauza concurenței sau a inhibării bacteriilor saprofite. În cazul în care se obțin rezultate pozitive clare în urma testelor de selecție, însă testele de izolare sunt negative, trebuie repetate testele de izolare. 12 Identificarea fiabilă a culturilor pure de izolări prezumtive de R. solanacearum se obține
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
Mărimea standard a eșantionului este de 200 de tuberculi pe test. O procedură mai intensivă de eșantionare implică efectuarea mai multor teste pe eșantioane de această mărime. Un număr mai mare de tuberculi într-un eșantion va duce la o inhibare sau o interpretare dificilă a rezultatelor. Cu toate acestea, procedura se poate aplica cu ușurință eșantioanelor cu mai puțin de 200 tuberculi în cazul în care este disponibil un număr mai mic de tuberculi. - Validarea tuturor metodelor de detectare descrise
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]