359 matches
-
cu fază inversată de C(18) (pct. 4.5.1), iar concentrația este măsurată printr-un detector de UV (325 nm) sau un detector de fluorescență (excitație: 325 nm, emisie: 475 nm) (pct. 4.5.2). Se injectează o cantitate alicotă (de exemplu 20 μl) de soluție metanolică obținută conform pct. 5.4 și se realizează o eluție cu faza mobilă (pct. 3.9). Se calculează media peak-urilor înălțimii mai multor injecții din aceeași soluție de probă și media peak-urilor înălțimii
EUR-Lex () [Corola-website/Law/154912_a_156241]
-
2) . 1000 [Ul/kg], w = -------------------------------- V(1) . m în care: beta = concentrația de vitamina A din soluția de probă (pct. 5.4) la Ul/ml; V(1) = volumul soluției de probă (pct. 5.4), în ml; V(2) = volumul cantității alicote luate conform pct. 5.4, în ml; m = masa porțiunii de testare, în g. 7. Observații 7.1. Pentru probe cu concentrație redusă de vitamina A poate fi util să se combine extractele de eter de petrol din două încărcături
EUR-Lex () [Corola-website/Law/154912_a_156241]
-
eter de petrol tubului de separare. Se spală extractele combinate din eter de petrol, după cum este descris la pct. 5.3.1, și se procedează după cum este descris acolo. 5.4. Prepararea soluției probă pentru HPLC: se pipetează o cantitate alicotă din soluția de eter de petrol (de la pct. 5.3.1 la pct. 5.3.2) într-un balon în formă de pară, de 250 ml (pct. 4.2.4). Se evaporă solventul aproape de uscare pe evaporatorul rotativ (pct. 4
EUR-Lex () [Corola-website/Law/154912_a_156241]
-
cu fază inversată de C(18) (pct. 4.5.1), iar concentrația este măsurată printr-un detector de fluorescență (excitație: 295 nm, emisie: 330 nm) sau un detector de UV (292 nm) (pct. 4.5.2). Se injectează o fracție alicotă (de exemplu: 20 μl) de soluție metanolică obținută conform pct. 5.4 și se realizează o eluție cu faza mobilă (pct. 3.8). Se calculează media înălțimii peak-ului mai multor injecții din aceeași soluție de probă și mediile înălțimii peak-ului
EUR-Lex () [Corola-website/Law/154912_a_156241]
-
2) [mg/kg] / V(1) x m, în care: beta = concentrația de vitamina E din soluția de probă (pct. 5.4) în Ul/ml; V(1) = volumul soluției de probă (pct. 5.4), în μg/ml; V(2) = volumul cantității alicote folosite la pct. 5.4, în ml; m = masa porțiunii de testat, în g. 7. Observații 7.1. Pentru probe cu concentrație redusă de vitamina E poate fi util să se combine extractele de eter de petrol din două încărcături
EUR-Lex () [Corola-website/Law/154912_a_156241]
-
eșantioanelor de lichior înainte de analiza prin cromatografie în fază gazoasă Extragerea alcoolului din băuturile spirtoase cu un conținut mare de zahăr pentru a determina concentrația în trans-anetol prin cromatografia capilară în fază gazoasă. 12.1. Principiu Se prelevează o parte alicotă din eșantionul de lichior, la care se adaugă etalonul intern, la o concentrație similară celei a analitului (trans-anetolul) prezent în lichior. Se adaugă apoi fosfat de sodiu dodecahidrat și sulfat de amoniu anhidru. Amestecul se agită bine și se refrigerează
jrc5859as2002 by Guvernul României () [Corola-website/Law/91031_a_91818]
-
celei a analitului (trans-anetolul) prezent în lichior. Se adaugă apoi fosfat de sodiu dodecahidrat și sulfat de amoniu anhidru. Amestecul se agită bine și se refrigerează. Se separă două faze, iar faza alcoolică superioară se recuperează. Se prelevează o parte alicotă din această fază alcoolică și se diluează cu o soluție de etanol de 45% vol. (pct. 4.4). Trebuie menționat că în acest stadiu nu se adaugă nici un etalon intern, deoarece a fost deja adăugat. Soluția obținută se analizează prin
jrc5859as2002 by Guvernul României () [Corola-website/Law/91031_a_91818]
-
și un reziduu solid. Stratul de alcool trebuie să fie limpede; dacă nu este așa, se pune din nou balonul în frigider până se observă o separare netă. Când stratul de alcool este limpede, se prelevează cu grijă o parte alicotă (10 ml, de exemplu), fără a tulbura stratul apos, apoi se pune într-un flacon de sticlă brună și se închide cu grijă. 12.4.3. Prepararea extractului de eșantion ce trebuie analizat Se așteaptă până când extractul (pct. 12.4
jrc5859as2002 by Guvernul României () [Corola-website/Law/91031_a_91818]
-
10% (pct. 4.5) și se transferă cu ajutorul spălărilor de apă distilată (pct. 4.1) într-un balon gradat de 50 ml (pct. 5.10). Conținutul se completează cu apă distilată) până la semn, la temperatura camerei. Se rezervă o parte alicotă de 5 ml din această soluție de cenușă pentru prepararea soluției de eșantion ce se utilizează pentru testarea fotometrică a fosfaților. 7.2. Testare fotometrică a fosfaților 7.2.1. Soluție comparativă 7.2.1.1. Se introduc 10 ml
jrc5859as2002 by Guvernul României () [Corola-website/Law/91031_a_91818]
-
10% (pct. 4.5) într-un balon gradat (pct. 5.10) și se completează până la semn cu apă distilată (pct. 4.1). 7.2.1.2. Într-un balon gradat de 20 ml (pct. 5.11), se introduce o parte alicotă de 5 ml din această soluție (pct. 7.2.1.1), apoi se adaugă 1 ml de acid sulfuric de 1 N (pct. 4.6) și 2 ml de reactiv la fosfat (pct. 4.8). Se completează până la un volum
jrc5859as2002 by Guvernul României () [Corola-website/Law/91031_a_91818]
-
1.4. Se varsă această soluție comparativă într-o cuvă de 1 cm (pct. 5.13). 7.2.2. Soluție de eșantion 7.2.2.1. Într-un balon gradat de 20 ml (pct. 5.11), se introduce o parte alicotă de 5 ml din soluția de cenușă (pct. 7.1.8), apoi se adaugă 1 ml de acid sulfuric de 1 N (pct. 4.6) și 2 ml de reactiv la fosfat (pct. 4.8). Se completează până la un volum
jrc5859as2002 by Guvernul României () [Corola-website/Law/91031_a_91818]
-
12) într-o cuvă de 1 cm (pct. 5.13) la 420 nm în raport cu soluția comparativă (pct. 7.2.1.4). 7.2.3. Curba de etalonare 7.2.3.1. Pentru a stabili curba de etalonare, se adaugă părți alicote de 2 ml de reactiv la fosfat (pct. 4.8) în baloane gradate de 20 ml (pct. 5.11) care conțin fiecare 1 ml de acid sulfuric 1 N (pct. 4.6) și, respectiv, 0, 2, 4, 6, 8 și
jrc5859as2002 by Guvernul României () [Corola-website/Law/91031_a_91818]
-
continuare, solul se mesteca bine cu o spatula și/sau prin agitarea balonului. Dacă studiul se desfășoară în condiții de orezărie, solul și apa se amestecă bine după aplicarea substanței de testat. Se analizează substanță de testat prezenta în părți alicote mici (de exemplu 1 g) din solurile tratate pentru a verifica dacă repartizarea este uniformă. În continuare este prezentată o metodă alternativă. Tratamentul aplicat trebuie să corespundă celei mai mari rate de aplicare a produsului fitosanitar recomandate în instrucțiunile de
32004L0073-ro () [Corola-website/Law/292696_a_294025]
-
sol (1 până la 2 kg) cu substanță de testat, amestecându-se bine într-un malaxor adecvat, si se transferă părți mici de 50 până la 200 g în baloane de incubare (de exemplu cu ajutorul unor repartitoare de probe). Se analizează părți alicote mici (de exemplu de 1 g) din lotul de sol tratat pentru a verifica dacă repartizarea substanței de testat este uniformă. Această procedură este preferabila, deoarece permite o repartizare mai uniformă a substanței de testat în sol. Se incubează și
32004L0073-ro () [Corola-website/Law/292696_a_294025]
-
testul Coggins pentru depistarea anemiei infecțioase a ecvideelor, cu un rezultat negativ; ii) un test de seroneutralizare pentru depistarea arteritei virale. Un test de izolare a virusului arteritei virale trebuie să fie efectuat cu un rezultat negativ pe o parte alicotă a întregului material seminal al armăsarului donator, cu excepția cazului în care există un rezultat negativ pentru o diluție de 1/4; iii) un test de depistare a metritei contagioase a ecvideelor, efectuat de două ori la un interval de 7
jrc2666as1995 by Guvernul României () [Corola-website/Law/87820_a_88607]
-
ml tampon concentrat (apendicele 4). Se folosesc 500 μl pentru a testa R. solanacearum, 500 μl pentru Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus și 500 μl pentru referință. Se adaugă glicerol steril la concentrația finală de 10-25 % (volum) la 500 μl de alicote de referință și la alicota de testare rămasă, se omogenizează în vortex și se depozitează la o temperatură situată între - 16 și - 24 °C (săptămâni) sau între - 68 și - 86 °C (luni). Alicotele de testare se păstrează în timpul testelor la
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
Se folosesc 500 μl pentru a testa R. solanacearum, 500 μl pentru Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus și 500 μl pentru referință. Se adaugă glicerol steril la concentrația finală de 10-25 % (volum) la 500 μl de alicote de referință și la alicota de testare rămasă, se omogenizează în vortex și se depozitează la o temperatură situată între - 16 și - 24 °C (săptămâni) sau între - 68 și - 86 °C (luni). Alicotele de testare se păstrează în timpul testelor la o temperatură de 4-10 °C.
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
de 10-25 % (volum) la 500 μl de alicote de referință și la alicota de testare rămasă, se omogenizează în vortex și se depozitează la o temperatură situată între - 16 și - 24 °C (săptămâni) sau între - 68 și - 86 °C (luni). Alicotele de testare se păstrează în timpul testelor la o temperatură de 4-10 °C. Nu se recomandă congelările și decongelările repetate. În cazul în care extrasele trebuie transportate, livrarea trebuie efectuată într-o geantă frigorifică în termen de 24 ore. 1.1
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
cazul în care este posibil, ar trebui să se folosească drept control similar pe aceeași lamă țesut infectat în mod natural (conservat prin liofilizare sau congelare la o temperatură între - 16 și - 24 °C). În calitate de control negativ, se pot folosi alicote de extracte de eșantioane care au dat rezultate negative la testele anterioare de detectare a R. solanacearum. Materialele de control pozitiv și negativ standardizate disponibile pentru acest test sunt prevăzute în apendicele 3. Se folosesc, pentru microscop, lame cu multe
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
ar trebui incluse în testul PCR: - Extractul eșantionului care a produs anterior rezultate negative pentru depistarea R. solanacearum; - Tampoanele de control utilizate pentru a extrage bacteria și ADN din eșantion; - Amestecul reactiv pentru PCR. Următoarele controale pozitive ar trebui incluse: - Alicote ale extractelor concentrate resuspendate la care s-a adăugat R. solanacearum (preparare: a se vedea apendicele 3 B). - Suspensie de 106 de celule pe ml dintr-un izolat virulent de R. solanacearum în apă (exemplu, NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
de eșantioane proaspăt preparate, dar se pot folosi și extracte de eșantion conservate în soluție de glicerol la temperaturi cuprinse între - 16 °C și - 24 °C sau între - 68 °C și - 86 °C. Drept eșantioane de control negativ, se folosesc alicote de extracte de eșantion care au dat anterior rezultate negative la testele de identificare a R. solanacearum. Drept eșantioane de control pozitiv, se prepară suspensii conținând 105-106 de celule pe ml de biovar 2 R. solanacearum (de exemplu, sușa NCPPB
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
extract de eșantion care a dat anterior rezultate negative pentru R. solanacearum și o suspensie a unei bacterii care nu provoacă reacții încrucișate într-un tampon fosfat (PBS) ca eșantioane de control negativ. Drept eșantion de control pozitiv, se folosesc alicote de extracte de eșantion care au dat anterior rezultate negative, amestecate cu 103-104 de celule/ml de biovar 2 de R. solanacearum (de exemplu, sușa NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857; a se vedea apendicele 2 A și B). Pentru
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
disponibile pentru utilizare cu acest test sunt enumerate în apendicele 3 litera A. Materialul de control se testează în același mod ca și eșantioanele. Au fost validate două protocoale ELISA: (a) ELISA indirect (Robinson-Smith et al., 1995) (1) Se folosesc alicote de 100-200 μl de extract concentrat. (Se încălzește timp de patru minute la 100 °C în baie de abur sau într-un bloc de încălzire pentru a reduce rezultatele nespecifice în anumite cazuri). (2) Se adaugă un volum egal de
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
în baie de abur sau într-un bloc de încălzire pentru a reduce rezultatele nespecifice în anumite cazuri). (2) Se adaugă un volum egal de tampon dublu concentrat (apendicele 4) și se omogenizează în agitator. (3) Se aplică 100 μl alicote în fiecare dintre minimum două godeuri ale plăcii de microtitrare (de exemplu, Nunc-Polysorp sau echivalent) și se incubează o oră la 37 °C sau peste noapte la 4 °C. (4) Se scot extractele din godeuri. Se spală godeurile de trei
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]
-
agitator. Se stabilesc niveluri decimale de contaminare continuând diluarea în următoarele cinci microfiole. Cele șase microfiole contaminate vor fi utilizate drept control pozitiv. Cele patru microfiole necontaminate se vor folosi în calitate de control negativ. Se etichetează microfiolele în consecință. Se prepară alicote de 100 μl în microfiole sterile de 1,5 ml pentru a obține nouă replici din fiecare eșantion de control. Se păstrează între - 16 și - 24 °C până la utilizare. Prezența și nivelul R. solanacearum în eșantioanele de control trebuie confirmate
32006L0063-ro () [Corola-website/Law/295071_a_296400]