1,796 matches
-
baza Janse, 1988. 6.1 Se utilizează până la 10 plante test de răsad de tomată sau de vinete în stadiul celei de a treia frunze adevărate pentru fiecare eșantion. Plantele de test nu se udă cu 24 de ore înaintea inoculării. 6.2 Se distribuie 100 μl de extract concentrat resuspendat între plantele de test. Se inoculează în tulpină între cotiledoane și în unul sau mai multe alte locuri. 6.3 Prin aceeași tehnică se inoculează 10 răsaduri cu o suspensie
jrc3681as1998 by Guvernul României () [Corola-website/Law/88841_a_89628]
-
6 Dacă se consideră util, se verifică absența infecției în loturile de plante de test care nu prezintă semne de infecție. Din fiecare plantă de test se îndepărtează o secțiune de 1 cm de tulpină 2 cm deasupra punctului de inoculare. Se omogenizează țesuturile într-un tampon de macerare. Se efectuează o diluare galvao-plastică (secțiunea III.5.1) Dacă este pozitivă, se identifică culturile pure cu morfologie caracteristică (secțiunea II.4.1) și se confirmă culturile de Ralstonia solanacearum printr-un
jrc3681as1998 by Guvernul României () [Corola-website/Law/88841_a_89628]
-
de anticorpi contra virusului bolii Newcastle. Ouăle inoculate se păstrează la o temperatură de 37 șC și se privesc zilnic în contra-lumină. Pe rând, ouăle care conțin embrioni morți sau muribunzi, precum și toate ouăle care rămân după patru zile de la inoculare, trebuie refrigerate la 4 șC, iar lichidul alantoidian/amniotic trebuie examinat pentru depistarea hemaglutininelor. 5. Interpretare Dacă hemaglutinarea lipsește și nu s-a izolat nici un virus, testul se va considera negativ. Izolarea virusului bolii Newcastle va însemna că lotul va
jrc2655as1995 by Guvernul României () [Corola-website/Law/87809_a_88596]
-
pregăti și alte țesuturi de pești pentru examene suplimentare. II. Pregătirea probelor în vederea examenului virusologic 1. Congelarea în cazuri excepționale Dacă se întâlnesc dificultăți de ordin practic (de pildă, condiții climaterice nefavorabile, zile nelucrătoare, probleme de laborator etc) care împiedică inocularea celulelor în intervalul de 48 de ore de la colectarea probelor de țesuturi, se admit congelarea acestor probe de țesuturi într-un mediu de cultură celulară la - 20°C sau la o temperatură inferioară și efectuarea unui examen virusologic în decurs
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
80°C în intervalul de 48 de ore de la luarea probelor, el poate fi reutilizat o singură dată pentru un examen virusologic. Dacă se întâlnesc dificultăți (cum ar fi o pană de incubator, probleme de culturi celulare etc.) care împiedică inocularea celulelor în cele 48 de ore de la colectarea probelor de țesuturi, se poate congela lichidul de suprafață la - 80°C și se poate efectua un examen virusologic în decurs de patrusprezece zile. Inainte de a inocula celulele, se amestecă lichidul
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
cu bicarbonat. Mediul folosit pentru cultura celulară în unități deschise poate fi tamponat cu Tris-HCL (23 mM) și cu bicarbonat de sodiu (6 mM). PH-ul trebuie să fie de 7,6 ± 0,2. Culturile celulare care se folosesc pentru inoculare cu țesuturi trebuie să fie de preferință tinere (de patru până la 48 de ore) și aflate în faza de creștere activă (non confluentă) în momentul inoculării. 2. Inocularea culturilor celulare Se inoculează o suspensie de organe tratată cu antibiotice în
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
trebuie să fie de 7,6 ± 0,2. Culturile celulare care se folosesc pentru inoculare cu țesuturi trebuie să fie de preferință tinere (de patru până la 48 de ore) și aflate în faza de creștere activă (non confluentă) în momentul inoculării. 2. Inocularea culturilor celulare Se inoculează o suspensie de organe tratată cu antibiotice în culturile celulare la două diluții: diluția inițială și o diluție a acesteia la 1:10, ajungându-se respectiv la diluții finale ale materialului tisular într-un
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
fie de 7,6 ± 0,2. Culturile celulare care se folosesc pentru inoculare cu țesuturi trebuie să fie de preferință tinere (de patru până la 48 de ore) și aflate în faza de creștere activă (non confluentă) în momentul inoculării. 2. Inocularea culturilor celulare Se inoculează o suspensie de organe tratată cu antibiotice în culturile celulare la două diluții: diluția inițială și o diluție a acesteia la 1:10, ajungându-se respectiv la diluții finale ale materialului tisular într-un mediu de
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
proaspete folosindu-se o suprafață celulară similară cu cea a culturii primare. Părți alicote din mediu (lichid de suprafață) provenind de la toate culturile/cupulele care constituie cultura primară se reunesc, în funcție de cultura de celule, la șapte sau zece zile de la inoculare. Amestecurile respective sunt apoi inoculate în culturile celulare omoloage, nediluate și diluate la 1:10 (dând diluții finale ale lichidului de suprafață de respectiv 1:10 și 1:100), după descrierea din partea I III 2. Se pot de asemenea inocula
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
respectiv 1:10 și 1:100), după descrierea din partea I III 2. Se pot de asemenea inocula părți alicote de 10% din mediul care constituie cultura primară direct într-o cupulă cu culturi celulare proaspete (sub-culturi de cupulă la cupulă). Inocularea poate fi precedată de o preincubare a diluțiilor cu antiser împotriva virusului NPI la o diluție corespunzătoare, după descrierea din partea I II 3. Se incubează apoi culturile inoculate timp de șapte până la zece zile la 15°C, ținându-se cont
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
zile și supuse unei noi sub-culturi urmate de alte șapte zile de incubare. Dacă se produce un ECP toxic după trei zile, celulele pot fi lăsate o dată și incubate pentru a se ajunge la numărul total de patrusprezece zile de la inocularea inițială. Nu trebuie să existe semne de toxicitate în cursul ultimelor șapte zile de incubare. Dacă se produce o contaminare bacteriană în ciuda tratamentului cu antibiotice, sub-cultura trebuie să fie precedată de o centrifugare la 2000-4000 x g timp de 15
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
alicote se amestecă și se incubează timp de 60 de minute la 15°C cu părți egale din reactivii enumerați în partea I IV 2. III.1. Culturi celulare și medii A se vedea partea I III 1. III.2. Inocularea culturilor celulare A se vedea partea I III 3. III.4. Microscopie Se inspectează în fiecare zi culturile celulare inoculate pentru a se distinge apariția unui ECP la o mărire de 40-150 de ori. Dacă formarea unui ECP este inhibată
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
SHV într-o zonă avizată. Se pot supune țesuturi și altor probe de diagnostic, cum ar fi tehnicile RT-PCR sau IF pe elemente congelate sau imunohistochimia pe țesuturi fixate în formol. Aceste tehnici trebuie să fie mereu însoțite de o inoculare a țesuturilor nefixate pe culturi celulare. PARTEA III Dovada absenței anterioare a SHV și/sau NHI în zonele sau exploatațiile din zone neavizate Linii directoare și criterii aplicabile unui program de inspecții sanitare oficiale 1. Un program de inspecții sanitare
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
celulare pe celule BF-2 sau RTG-2 pentru virusul SHV șu pe celule EPC pentru virusul NHI. Trebuie să se folosească un mediu de cultură celulară adiționat cu cel puțin 10% ser. Se folosește o multiplicare slabă a infecției (MOI) pentru inoculare (< 1). Atunci când ECP este total, virusul este colectat prin centrifugare din lichidul de suprafață de la culturile celulare la 2000 x g timp de cincisprezece minute, sterilizat prin filtrare cu o membrană de 0,45 μm și repartizat în criotuburi etichetate
jrc4925as2000 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90093_a_90880]
-
pot include titrarea microorganismului în toate țesuturile care pot fi afectate (de exemplu, să prezinte leziuni) și în organele principale: rinichi, creier, ficat, splină, plămâni, vezică urinară, sânge, ganglioni limfatici, tract gastrointestinal, timus, precum și la nivelul leziunilor la locul de inoculare la animalele decedate sau muribunde și la sacrificiul intermediar și final. Informațiile obținute prin testări de toxicitate, patogenitate și contagiozitate acută au o valoare deosebită în evaluarea pericolelor care pot apărea în situații de accident și a riscurilor pentru utilizatori
jrc5110as2001 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90278_a_91065]
-
Efectele asupra râmelor Obiectul testului Trebuie prezentate informații cu privire la toxicitatea, contagiozitatea și patogenitatea față râme. 8.6 Efectele asupra microorganismelor nețintă din sol Se recomandă prezentarea impactului asupra microorganismelor nețintă și a prădătorilor acestora (de exemplu, protozoarele pentru agenții de inoculare bacterieni). Specialiștii trebuie să decidă cu privire la necesitatea efectuării acestor studii suplimentare. Aceste decizii trebuie să ia în considerație informațiile existente în această secțiune sau în alte secțiuni, în special datele referitoare la specificitatea microorganismului și la expunerea anticipată. Se mai
jrc5110as2001 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90278_a_91065]
-
ordine. Înregistrările ar trebui să includă tipul, originea și identificarea eșantionului, data și ora prelevării, numele persoanei care a prelevat eșantionul, denumirea și adresa laboratorului care a analizat eșantionul, data investigării eșantioanelor în laborator și detalii cu privire la metoda utilizată, inclusiv inocularea de diverse geloze, temperatura de incubație, timpul și rezultatele sub formă de ufc per placă utilizate pentru calcularea rezultatului în ufc/cm2 de suprafață. Înregistrările trebuie semnate de o persoană responsabilă din laborator. Documentele trebuie păstrate în unitate timp de
jrc4974as2001 by Guvernul României () [Corola-website/Law/90142_a_90929]
-
ar putea fi expus la MMG există biota care ar putea fi afectate în mod negativ de microorganismele folosite în activitățile de utilizare controlată); (ii) caracteristicile activității (de exemplu amploarea; natura); (iii) orice operațiuni care nu sunt standard (de exemplu inocularea animalelor cu MMG; echipament care ar putea genera aerosoli). Luarea în considerare a elementelor de la pct. (i)-(iii) în cazul unei anumite activități poate mări, reduce sau lăsa neschimbat nivelul de risc asociat MMG identificat conform art. 6. 8. Analiza
jrc3700as1998 by Guvernul României () [Corola-website/Law/88860_a_89647]
-
a fost desemnat „ medicament orfan ” ( un medicament utilizat în afecțiuni rare ) în data de 11 decembrie 2001 . Medicamentul poate fi obținut numai pe bază de rețetă . Cum se utilizează Elaprase ? Elaprase este administrat în fiecare săptămână , sub formă de perfuzie ( inoculare intravenoasă ) . Doza pentru adulți , copii și adolescenți este de 0, 5 mg/ kg greutate corporală . Doza corespunzătoare de Elaprase trebuie diluată în ser fiziologic înainte de a fi perfuzată . Perfuzarea trebuie să dureze 3 ore . Cu toate acestea , dacă pacientul nu
Ro_288 () [Corola-website/Science/291047_a_292376]
-
100 000 unități internaționale de aglutinare per mililitru. 18. (a) Testarea activității pe cobai: Se folosesc cobai albinoși cu greutatea între 400 și 600 g. Cobaii trebuie să fie sănătoși și controlați prin palpare pentru a stabili dacă, la momentul inoculării tuberculinei, tonusul lor muscular a rămas normal în pofida sensibilizării în prealabil. (aa) Cobaii sunt sensibilizați prin inocularea experimentală a cca. 0,5 mg de bacili vii de tuberculoză în soluție salină fiziologică sub pielea de pe crupă sau de la ceafă. Se
jrc29as1966 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85161_a_85948]
-
albinoși cu greutatea între 400 și 600 g. Cobaii trebuie să fie sănătoși și controlați prin palpare pentru a stabili dacă, la momentul inoculării tuberculinei, tonusul lor muscular a rămas normal în pofida sensibilizării în prealabil. (aa) Cobaii sunt sensibilizați prin inocularea experimentală a cca. 0,5 mg de bacili vii de tuberculoză în soluție salină fiziologică sub pielea de pe crupă sau de la ceafă. Se folosește sușa de tip bovin, furnizată la cerere de Paul-Ehrlich-Institut din Frankfurt-pe-Main. Nu se administrează doze excesive
jrc29as1966 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85161_a_85948]
-
N. 3.7 Amoniac, d: 0,91. 3.8 Substanțe standard: Clorotetracicline, oxitetracicline, tetracicline, a căror activitate este exprimată în condiții de clorură acidă. 3.9 Microorganisme: B cereus ATTC nr. 11.778 Menținerea sușei părinte, prepararea suspensiei sporilor și inocularea mediului de cultură: se urmăresc instrucțiunile date la pct. 3.1 și 3.2 ale metodei pentru determinarea conținutului de Clorotetraciclină, oxitetraciclină, tetraciclină prin difuziune prin geloză care este descrisă în partea 2 a prezentei anexe. 3.10 Mediul de
jrc149as1972 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85284_a_86071]
-
succesive (1 + 1) folosind soluție tampon de fosfat (4.3). 6.2.2 Oxitetraciclină și tetraciclină Se procedează cum este indicat la pct. 6.2.1, folosind amestecul (4.10) în loc de amestecul (4.9). 7. Metoda de determinare 7.1 Inocularea mediului de cultură Se inoculează la 50 - 60ș C mediul de bază pentru determinarea (4.1) cu suspensia de spori (3.2). 7.2 Prepararea tăvilor Difuzia în geloză se realizează în tăvi folosind 4 concentrații ale soluției standard (S3
jrc149as1972 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85284_a_86071]
-
această soluție în fiecare din cele 2 tuburi, și 0,5 ml (= 0,24 μg) în fiecare din celelalte 2 tuburi. Se completează volumul din ultimele două tuburi până la 1 ml cu soluția tampon de fosfat (4.2). 7.2 Inocularea mediului de cultură Se inoculează mediul de bază pentru determinare (4.1) cu inoculumul (3.2) pentru a obține cu fotometrul la 590 nm transmisia luminii 85 % în celule de 5 cm sau transmisia 92 % în celule de 2 cm
jrc149as1972 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85284_a_86071]
-
soluția (4.6) pentru a obține o concentrație presupusă de oleandomicină de 0,1 μg pe ml (= U2). Apoi se prepară concentrațiile U4, U2 și U1, prin diluări (1 + 1) folosind soluția (4.6). 7. Metoda de determinare 7.1 Inocularea mediului de cultură Se inoculează la 60ș C mediul de bază pentru determinarea (4.2) cu suspensia de spori (3.2). 7.2 Prepararea talerelor Difuzia în geloză este realizată în tăvi folosind 4 concentrații ale soluțiile standard (S3, S4
jrc149as1972 by Guvernul României () [Corola-website/Law/85284_a_86071]